多发性骨髓瘤的CAR-T细胞疗法( 八 )


此外 , 肿瘤微环境中的免疫抑制因子对 CAR-T 细胞缺乏耐久性的贡献也值得注意 。 最近报道了一种新的全人类 BCMA-CAR , 它具有针对免疫抑制性 TGF-β 的显性负域 , 表现出强大的增殖和持久性 , 并且在功能上不受富含 TGF-β 的敌对微环境的影响[79] 。
另一种制造优化也已尝试放大 CAR T 细胞在骨髓瘤中的效力 , 是 T 细胞组成 。 在转导前和扩增阶段使用的更高 CD4:CD8 T 细胞比率与更大的体内 BCMA 靶向 CAR T 细胞扩增和反应相关[74] , 证实了淋巴瘤中 CD19 靶向 CAR T 细胞疗法的报告 和ALL[80,81] 。 JCARH125 以指定的 CD4:CD8 比率为 1:1 注入RRMM 患者 (EVOLVE) 。 最新的临床数据报告了这些产品在所有剂量水平的强劲扩张 , 患者的 ORR (82%) 与复合 T 细胞密切相关[82] 。
基因传递方法是MM CAR T生产中的另一个变量 , 最常规地选择病毒转导 。 鉴于该系统存在随机插入突变的风险 , 并且通常与费力且昂贵的制造程序相关 , 因此已经引入了其他将 CAR 引入 T 细胞的非病毒方法 。 Poseida Therapeutics 利用搭载转座子技术 (P-BCMA-101) 开发了第一种用于骨髓瘤的非病毒 CAR T 细胞产品 。 与病毒传递的那些相比 , 这种 mRNA 电穿孔方法显示出 >95% 的效率和更稳定和更高的 CAR 表达 , 加上具有记忆干细胞表型的 T 细胞扩增的延长活性[74,83,84] 。 此外 , 另一个非病毒系统 , 睡美人 , 用于将 SLAMF7-CAR 引入效应细胞 , 并显示出良好的整合[60] 。
另一个 CAR T 制造考虑因素是 moAb 的来源 。 淋巴瘤中其他成功的 CD19 靶向 CAR T 细胞的治疗局限性之一是由于宿主免疫抗鼠 CAR 反应导致 T 细胞自相残杀[80] 。 因此 , 将免疫原性较低的人源化 ScFV 整合到 T 细胞中是一种务实的方法 。 实际上 , 由MSKCC开发的完全人源化的靶向BCMA的CAR T细胞(FCARH143和JCARH125)表现出快速扩增 , 根除大量肿瘤负担和更持久的患者反应[66,78] 。 一种新颖的 , 完全人类的 , 仅重链的抗BCMA结合域(FHVH33)而非完整的ScFV , 其设计旨在避免宿主免疫细胞的识别 , 可诱导深度和持久性反应 , 且毒性可控[53] 。
六、观点
寻找新的可靶向骨髓瘤抗原至关重要;然而 , 迄今为止经过审议的那些似乎无法发挥 BCMA 的潜力 。 作为单一药剂 , 非 BCMA CAR T 细胞缺乏有意义的结果 。 对这些 CARS 的改进 , 例如使它们具有双特异性 , 通常需要 BCMA 作为伴随的靶向抗原 。 随着 bb2121 即将获得 FDA 的批准 , 阐明潜在耐药机制和规避方法的研究必不可少 。
合成生物学对于设计更有效的靶向 BCMA 的 CAR T 细胞至关重要 , 然而 , 维持肿瘤相关 BCMA 表达和防止抗原丢失 , 是它们发挥效力所必需的 。 在这种情况下 , 已经探索了药理学手段 。 γ-分泌酶抑制剂 (GSI) 治疗能够增加肿瘤表面的 BCMA 密度 , 同时降低 sBCMA 浓度并提高 CAR T 细胞抗肿瘤活性[85,86] 。 目前正在 I 期试验 (NCT03502577) 中研究口服 GSI 和 CAR T 细胞 。 在 10名可评估的患者中 , 分别有 30% 和 50% 达到了 sCR/CR 和 VGPR[85,87] 。